Výsledky vyhledávání - "Провоспалительные цитокины"
-
1
Autoři: a další
Přispěvatelé: a další
Zdroj: Complex Issues of Cardiovascular Diseases; Том 14, № 5 (2025); 210-235 ; Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний; Том 14, № 5 (2025); 210-235 ; 2587-9537 ; 2306-1278
Témata: Внеклеточный матрикс, Coronary artery, Internal thoracic arter, Endothelial dysfunction, Pro-inflammatory cytokines, Basement membrane, Extracellular matrix, Коронарная артерия, Внутренняя грудная артерия, Дисфункция эндотелия, Провоспалительные цитокины, Базальная мембрана
Popis souboru: application/pdf
Relation: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1765/1104; Segers VFM, Bringmans T, De Keulenaer GW. Endothelial dysfunction at the cellular level in three dimensions: severity, acuteness, and distribution. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2023;325(2):H398-H413. doi:10.1152/ajpheart.00256.2023.; Horton WB, Barrett EJ. Microvascular Dysfunction in Diabetes Mellitus and Cardiometabolic Disease. Endocr Rev. 2021;42(1):29-55. doi:10.1210/endrev/bnaa025.; Özdemir VA, Nural N. Evaluation of risk factors for foot ulceration in individuals with chronic kidney disease. Wounds. 2023;35(10):E319-E328. doi:10.25270/wnds/23053.; Samberg M, Stone R 2nd, Natesan S, Kowalczewski A, Becerra S, Wrice N, Cap A, Christy R. Platelet rich plasma hydrogels promote in vitro and in vivo angiogenic potential of adipose-derived stem cells. Acta Biomater. 2019;87:76-87. doi:10.1016/j.actbio.2019.01.039.; Kleinbongard P, Heusch G. A fresh look at coronary microembolization. Nat Rev Cardiol. 2022;19(4):265-280. doi:10.1038/s41569-021-00632-2.; Pi X, Xie L, Patterson C. Emerging Roles of Vascular Endothelium in Metabolic Homeostasis. Circ Res. 2018;123(4):477-494. doi:10.1161/CIRCRESAHA.118.313237.; Koenen M, Hill MA, Cohen P, Sowers JR. Obesity, Adipose Tissue and Vascular Dysfunction. Circ Res. 2021;128(7):951-968. doi:10.1161/CIRCRESAHA.121.318093.; Kaur G, Harris NR. Endothelial glycocalyx in retina, hyperglycemia, and diabetic retinopathy. Am J Physiol Cell Physiol. 2023;324(5):C1061-C1077. doi:10.1152/ajpcell.00188.2022.; Cho ME, Brunt VE, Shiu YT, Bunsawat K. Endothelial dysfunction in chronic kidney disease: a clinical perspective. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2025;329(1):H135-H153. doi:10.1152/ajpheart.00908.2024.; Borri M, Jacobs ME, Carmeliet P, Rabelink TJ, Dumas SJ. Endothelial dysfunction in the aging kidney. Am J Physiol Renal Physiol. 2025;328(4):F542-F562. doi:10.1152/ajprenal.00287.2024.; Scialla JJ, Wolf M. Roles of phosphate and fibroblast growth factor 23 in cardiovascular disease. Nat Rev Nephrol. 2014;10(5):268-78. doi:10.1038/nrneph.2014.49.; Baaten CCFMJ, Vondenhoff S, Noels H. Endothelial Cell Dysfunction and Increased Cardiovascular Risk in Patients With Chronic Kidney Disease. Circ Res. 2023;132(8):970-992. doi:10.1161/CIRCRESAHA.123.321752.; Zeng Y, Buonfiglio F, Li J, Pfeiffer N, Gericke A. Mechanisms Underlying Vascular Inflammaging: Current Insights and Potential Treatment Approaches. Aging Dis. 2024;16(4):1889-1917. doi:10.14336/AD.2024.0922.; Singh A, Schurman SH, Bektas A, Kaileh M, Roy R, Wilson DM 3rd, Sen R, Ferrucci L. Aging and Inflammation. Cold Spring Harb Perspect Med. 2024;14(6):a041197. doi:10.1101/cshperspect.a041197.; Giacca M, Shah AM. The pathological maelstrom of COVID-19 and cardiovascular disease. Nat Cardiovasc Res. 2022;1(3):200-210. doi:10.1038/s44161-022-00029-5.; Rafii S, Butler JM, Ding BS. Angiocrine functions of organ-specific endothelial cells. Nature. 2016;529(7586):316-25. doi:10.1038/nature17040.; Gomez-Salinero JM, Redmond D, Rafii S. Microenvironmental determinants of endothelial cell heterogeneity. Nat Rev Mol Cell Biol. 2025;26(6):476-495. doi:10.1038/s41580-024-00825-w.; Bogdanov L, Shishkova D, Mukhamadiyarov R, Velikanova E, Tsepokina A, Terekhov A, Koshelev V, Kanonykina A, Shabaev A, Frolov A, Zagorodnikov N, Kutikhin A. Excessive Adventitial and Perivascular Vascularisation Correlates with Vascular Inflammation and Intimal Hyperplasia. Int J Mol Sci. 2022;23(20):12156. doi:10.3390/ijms232012156.; Chi J, Wang Q, Wang Z, Zeng W, Gao Y, Li X, Wang W, Wang J, Qu M. S100 calcium-binding protein A8 exacerbates deep vein thrombosis in vascular endothelial cells. Sci Rep. 2025;15(1):831. doi:10.1038/s41598-025-85322-6.; Göb V, Zimmermann L, Hemmen K, Haarmann A, Heinze KG, Schuhmann MK, Stegner D. Platelet-Derived PDGF-A Disrupts Blood-Brain Barrier Integrity in Ischemic Stroke-Brief Report. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2025;45(7):1166-1174. doi:10.1161/ATVBAHA.125.321191.; Skou ST, Mair FS, Fortin M, Guthrie B, Nunes BP, Miranda JJ, Boyd CM, Pati S, Mtenga S, Smith SM. Multimorbidity. Nat Rev Dis Primers. 2022;8(1):48. doi:10.1038/s41572-022-00376-4.; Frolov A, Lobov A, Kabilov M, Zainullina B, Tupikin A, Shishkova D, Markova V, Sinitskaya A, Grigoriev E, Markova Y, Kutikhin A. Multi-Omics Profiling of Human Endothelial Cells from the Coronary Artery and Internal Thoracic Artery Reveals Molecular but Not Functional Heterogeneity. Int J Mol Sci. 2023;24(19):15032. doi:10.3390/ijms241915032.; Stepanov A, Shishkova D, Markova V, Markova Y, Frolov A, Lazebnaya A, Oshchepkova K, Perepletchikova D, Smirnova D, Basovich L, Repkin E, Kutikhin A. Proteomic Profiling of Endothelial Cell Secretomes After Exposure to Calciprotein Particles Reveals Downregulation of Basement Membrane Assembly and Increased Release of Soluble CD59. Int J Mol Sci. 2024;25(21):11382. doi:10.3390/ijms252111382.; Lampsas S, Tsaplaris P, Pantelidis P, Oikonomou E, Marinos G, Charalambous G, Souvaliotis N, Mystakidi VC, Goliopoulou A, Katsianos E, Siasos G, Vavuranakis MA, Tsioufis C, Vavuranakis M, Tousoulis D. The Role of Endothelial Related Circulating Biomarkers in COVID-19. A Systematic Review and Meta-analysis. Curr Med Chem. 2022;29(21):3790-3805. doi:10.2174/0929867328666211026124033.; Andrianto, Al-Farabi MJ, Nugraha RA, Marsudi BA, Azmi Y. Biomarkers of endothelial dysfunction and outcomes in coronavirus disease 2019 (COVID-19) patients: A systematic review and meta-analysis. Microvasc Res. 2021;138:104224. doi:10.1016/j.mvr.2021.104224.; Wu Q, Cui J, Jiang Y, Li X, You C. Causal role of endothelial dysfunction in ischemic stroke and its subtypes: A two-stage analysis. SLAS Technol. 2025;33:100322. doi:10.1016/j.slast.2025.100322.; Hansra GK, Jayasena T, Hosoki S, Poljak A, Lam BCP, Rust R, Sagare A, Zlokovic B, Thalamuthu A, Sachdev PS. Fluid biomarkers of the neurovascular unit in cerebrovascular disease and vascular cognitive disorders: A systematic review and meta-analysis. Cereb Circ Cogn Behav. 2024;6:100216. doi:10.1016/j.cccb.2024.100216.; Qiu S, Cai X, Liu J, Yang B, Zügel M, Steinacker JM, Sun Z, Schumann U. Association between circulating cell adhesion molecules and risk of type 2 diabetes: A meta-analysis. Atherosclerosis. 2019;287:147-154. doi:10.1016/j.atherosclerosis.2019.06.908.; Roca-Rodríguez MDM, Ramos-García P, López-Tinoco C, Aguilar-Diosdado M. Significance of cell adhesion molecules profile during pregnancy in gestational diabetes mellitus. A systematic review and meta-analysis. Diabetes Res Clin Pract. 2023;202:110740. doi:10.1016/j.diabres.2023.110740.; Wang K, Lei L, Li G, Lan Y, Wang W, Zhu J, Liu Q, Ren L, Wu S. Association between Ambient Particulate Air Pollution and Soluble Biomarkers of Endothelial Function: A Meta-Analysis. Toxics. 2024;12(1):76. doi:10.3390/toxics12010076.; Waclawovsky AJ, Dos Santos EB, de Oliveira AAR, Stubbs B, Schuch FB. Plasma biomarkers of endothelial function in people with depressive disorder: A systematic review and meta-analysis. J Affect Disord. 2025;375:297-305. doi:10.1016/j.jad.2025.01.138.; Mangoni AA, Zinellu A. Circulating cell adhesion molecules in systemic sclerosis: a systematic review and meta-analysis. Front Immunol. 2024;15:1438302. doi:10.3389/fimmu.2024.1438302.; Piotti A, Novelli D, Meessen JMTA, Ferlicca D, Coppolecchia S, Marino A, Salati G, Savioli M, Grasselli G, Bellani G, Pesenti A, Masson S, Caironi P, Gattinoni L, Gobbi M, Fracasso C, Latini R; ALBIOS Investigators. Endothelial damage in septic shock patients as evidenced by circulating syndecan-1, sphingosine-1-phosphate and soluble VE-cadherin: a substudy of ALBIOS. Crit Care. 2021;25(1):113. doi:10.1186/s13054-021-03545-1.; Kutikhin AG, Shishkova DK, Velikanova EA, Sinitsky MY, Sinitskaya AV, Markova VE. Endothelial Dysfunction in the Context of Blood-Brain Barrier Modeling. J Evol Biochem Physiol. 2022;58(3):781-806. doi:10.1134/S0022093022030139.; Шишкова Д.К., Фролов А.В., Маркова В.Е., Маркова Ю.О., Каноныкина А.Ю., Лазебная А.И., Матвеева В.Г., Торгунакова Е.А., Кутихин А.Г. Современные подходы к моделированию дисфункции эндотелия и системному поиску ее циркулирующих маркеров. Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний. 2024. Т. 13. № S3. С. 173-190. doi:10.17802/2306-1278-2024-13-3S-173-190.; Шишкова Д.К., Маркова В.Е., Маркова Ю.О., Великанова Е.А., Синицкая А.В., Синицкий М.Ю., Тюрина А.Е., Степанов А.Д., Дылева Ю.А., Матвеева В.Г., Кутихин А.Г. Исследование патологического воздействия ионизированного кальция, кальципротеиновых мономеров и кальципротеиновых частиц на первичные артериальные эндотелиальные клетки. Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний. 2024. Т. 13. № 3. С. 167-181. doi:10.17802/2306-1278-2024-13-3-167-181.; Yan F, Liu X, Ding H, Zhang W. Paracrine mechanisms of endothelial progenitor cells in vascular repair. Acta Histochem. 2022;124(1):151833. doi:10.1016/j.acthis.2021.151833.; Chong MS, Ng WK, Chan JK. Concise Review: Endothelial Progenitor Cells in Regenerative Medicine: Applications and Challenges. Stem Cells Transl Med. 2016;5(4):530-8. doi:10.5966/sctm.2015-0227.; Шишкова Д.К., Фролов А.В., Маркова В.Е., Маркова Ю.О., Лазебная А.И., Кутихин А.Г. Актуальные проблемы методологии изучения нормальной и патологической физиологии эндотелиальных клеток в культуре. Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний. 2024. Т. 13. № 3. С. 118-129. doi:10.17802/2306-1278-2024-13-3-118-129.; Deer E, Herrock O, Campbell N, Cornelius D, Fitzgerald S, Amaral LM, LaMarca B. The role of immune cells and mediators in preeclampsia. Nat Rev Nephrol. 2023;19(4):257-270. doi:10.1038/s41581-022-00670-0.
-
2
Autoři: a další
Přispěvatelé: a další
Zdroj: Complex Issues of Cardiovascular Diseases; Том 14, № 5 (2025); 103-121 ; Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний; Том 14, № 5 (2025); 103-121 ; 2587-9537 ; 2306-1278
Témata: Внутренняя грудная артерия, Endothelial cells, Endothelial dysfunction, Pro-inflammatory cytokines, Cell adhesion molecules, Coronary artery, Internal thoracic artery, Эндотелиальные клетки, Дисфункция эндотелия, Провоспалительные цитокины, Молекулы клеточной адгезии, Коронарная артерия
Popis souboru: application/pdf
Relation: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1763/1103; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1763/2248; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1763/2249; Cahill PA, Redmond EM. Vascular endothelium - Gatekeeper of vessel health. Atherosclerosis. 2016;248:97-109. doi:10.1016/j.atherosclerosis.2016.03.007.; Amersfoort J, Eelen G, Carmeliet P. Immunomodulation by endothelial cells - partnering up with the immune system? Nat Rev Immunol. 2022; 22(9):576-588. doi:10.1038/s41577-022-00694-4.; Trimm E, Red-Horse K. Vascular endothelial cell development and diversity. Nat Rev Cardiol. 2023; 20(3):197-210. doi:10.1038/s41569-022-00770-1.; Kutikhin AG, Shishkova DK, Velikanova EA, Sinitsky MY, Sinitskaya AV, Markova VE. Endothelial Dysfunction in the Context of Blood-Brain Barrier Modeling. J Evol Biochem Physiol. 2022; 58(3):781-806. doi:10.1134/S0022093022030139.; Goncharov NV, Popova PI, Kudryavtsev IV, Golovkin AS, Savitskaya IV, Avdonin PP, Korf EA, Voitenko NG, Belinskaia DA, Serebryakova MK, Matveeva NV, Gerlakh NO, Anikievich NE, Gubatenko MA, Dobrylko IA, Trulioff AS, Aquino AD, Jenkins RO, Avdonin PV. Immunological Profile and Markers of Endothelial Dysfunction in Elderly Patients with Cognitive Impairments. Int J Mol Sci. 2024; 25(3):1888. doi:10.3390/ijms25031888.; Corban MT., Prasad A, Nesbitt L, Loeffler D, Herrmann J, Lerman LO, Lerman A. Local Production of Soluble Urokinase Plasminogen Activator Receptor and Plasminogen Activator Inhibitor-1 in the Coronary Circulation Is Associated With Coronary Endothelial Dysfunction in Humans. J Am Heart Assoc. 2018; 7(15):e009881. doi:10.1161/JAHA.118.009881.; Shishkova D, Markova V, Markova Y, Sinitsky M, Sinitskaya A, Matveeva V, Torgunakova E, Lazebnaya A, Stepanov A, Kutikhin A. Physiological Concentrations of Calciprotein Particles Trigger Activation and Pro-Inflammatory Response in Endothelial Cells and Monocytes. Biochemistry (Mosc). 2025; 90(1):132-160. doi:10.1134/S0006297924604064.; Stepanov A, Shishkova D, Markova V, Markova Y, Frolov A, Lazebnaya A, Oshchepkova K, Perepletchikova D, Smirnova D, Basovich L, Repkin E, Kutikhin A. Proteomic Profiling of Endothelial Cell Secretomes After Exposure to Calciprotein Particles Reveals Downregulation of Basement Membrane Assembly and Increased Release of Soluble CD59. Int J Mol Sci. 2024; 25(21):11382. doi:10.3390/ijms252111382.; Gomez Toledo A, Golden GJ, Cummings RD, Malmström J, Esko JD. Endothelial Glycocalyx Turnover in Vascular Health and Disease: Rethinking Endothelial Dysfunction. Annu Rev Biochem. 2025; 94(1):561-586. doi:10.1146/annurev-biochem-032620-104745.; Frolov A, Lobov A, Kabilov M, Zainullina B, Tupikin A, Shishkova D, Markova V, Sinitskaya A, Grigoriev E, Markova Y, Kutikhin A. Multi-Omics Profiling of Human Endothelial Cells from the Coronary Artery and Internal Thoracic Artery Reveals Molecular but Not Functional Heterogeneity. Int J Mol Sci. 2023; 24(19):15032. doi:10.3390/ijms241915032.; Shishkova D, Lobov A, Zainullina B, Matveeva V, Markova V, Sinitskaya A, Velikanova E, Sinitsky M, Kanonykina A, Dyleva Y, Kutikhin A. Calciprotein Particles Cause Physiologically Significant Pro-Inflammatory Response in Endothelial Cells and Systemic Circulation. Int J Mol Sci. 2022; 23(23):14941. doi:10.3390/ijms232314941.; Sinitsky M, Repkin E, Sinitskaya A, Markova V, Shishkova D, Barbarash O. Proteomic Profiling of Endothelial Cells Exposed to Mitomycin C: Key Proteins and Pathways Underlying Genotoxic Stress-Induced Endothelial Dysfunction. Int J Mol Sci. 2024; 25(7):4044. doi:10.3390/ijms25074044.; Baaten CCFMJ, Vondenhoff S, Noels H. Endothelial Cell Dysfunction and Increased Cardiovascular Risk in Patients With Chronic Kidney Disease. Circ Res. 2023; 132(8):970-992. doi:10.1161/CIRCRESAHA.123.321752.; Segers VFM, Bringmans T, De Keulenaer GW. Endothelial dysfunction at the cellular level in three dimensions: severity, acuteness, and distribution. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2023; 325(2):H398-H413. doi:10.1152/ajpheart.00256.2023.; Guzik TJ, Nosalski R, Maffia P, Drummond GR. Immune and inflammatory mechanisms in hypertension. Nat Rev Cardiol. 2024; 21(6):396-416. doi:10.1038/s41569-023-00964-1.
-
3
Autoři: a další
Přispěvatelé: a další
Zdroj: Complex Issues of Cardiovascular Diseases; Том 14, № 4 (2025); 196-215 ; Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний; Том 14, № 4 (2025); 196-215 ; 2587-9537 ; 2306-1278
Témata: Дисфункция эндотелия, Aortic valve, Internal thoracic artery, Saphenous vein, Microvessels, Pro-inflammatory cytokines, Endothelial dysfunction, Аортальный клапан, Внутренняя грудная артерия, Большая подкожная вена, Сосуды микроциркуляторного русла, Провоспалительные цитокины
Popis souboru: application/pdf
Relation: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1720/1074; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1720/2151; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1720/2152; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1720/2153; Cahill PA, Redmond EM. Vascular endothelium - Gatekeeper of vessel health. Atherosclerosis. 2016;248:97-109. doi:10.1016/j.atherosclerosis.2016.03.007.; Gimbrone MA Jr, García-Cardeña G. Endothelial Cell Dysfunction and the Pathobiology of Atherosclerosis. Circ Res. 2016;118(4):620-36. doi:10.1161/CIRCRESAHA.115.306301.; Segers VFM, Bringmans T, De Keulenaer GW. Endothelial dysfunction at the cellular level in three dimensions: severity, acuteness, and distribution. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2023;325(2):H398-H413. doi:10.1152/ajpheart.00256.2023.; Baaten CCFMJ, Vondenhoff S, Noels H. Endothelial Cell Dysfunction and Increased Cardiovascular Risk in Patients With Chronic Kidney Disease. Circ Res. 2023;132(8):970-992. doi:10.1161/CIRCRESAHA.123.321752.; Liberale L, Montecucco F, Tardif JC, Libby P, Camici GG. Inflamm-ageing: the role of inflammation in age-dependent cardiovascular disease. Eur Heart J. 2020;41(31):2974-2982. doi:10.1093/eurheartj/ehz961.; Müller L, Di Benedetto S. Inflammaging, immunosenescence, and cardiovascular aging: insights into long COVID implications. Front Cardiovasc Med. 2024;11:1384996. doi:10.3389/fcvm.2024.1384996.; Greenspan LJ, Weinstein BM. To be or not to be: endothelial cell plasticity in development, repair, and disease. Angiogenesis. 2021;24(2):251-269. doi:10.1007/s10456-020-09761-7.; Trimm E, Red-Horse K. Vascular endothelial cell development and diversity. Nat Rev Cardiol. 2023;20(3):197-210. doi:10.1038/s41569-022-00770-1.; Becker LM, Chen SH, Rodor J, de Rooij LPMH, Baker AH, Carmeliet P. Deciphering endothelial heterogeneity in health and disease at single-cell resolution: progress and perspectives. Cardiovasc Res. 2023;119(1):6-27. doi:10.1093/cvr/cvac018.; Rafii S, Butler JM, Ding BS. Angiocrine functions of organ-specific endothelial cells. Nature. 2016;529(7586):316-25. doi:10.1038/nature17040.; Peng Z, Shu B, Zhang Y, Wang M. Endothelial Response to Pathophysiological Stress. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2019;39(11):e233-e243. doi:10.1161/ATVBAHA.119.312580.; Шишкова Д.К., Фролов А.В., Маркова В.Е., Маркова Ю.О., Каноныкина А.Ю., Лазебная А.И., Матвеева В.Г., Торгунакова Е.А., Кутихин А.Г. Современные подходы к моделированию дисфункции эндотелия и системному поиску ее циркулирующих маркеров. Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний. 2024. Т. 13. № S3. С. 173-190. doi:10.17802/2306-1278-2024-13-3S-173-190.; Шишкова Д.К., Фролов А.В., Маркова В.Е., Маркова Ю.О., Лазебная А.И., Кутихин А.Г. Актуальные проблемы методологии изучения нормальной и патологической физиологии эндотелиальных клеток в культуре. Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний. 2024. Т. 13. № 3. С. 118-129. doi:10.17802/2306-1278-2024-13-3-118-129.; Богданов Л.А., Кошелев В.А., Мухамадияров Р.А., Каноныкина А.Ю., Лазебная А.И., Кондратьев Е.А., Степанов А.Д., Кутихин А.Г. Современные подходы к идентификации клеточных маркеров дисфункции эндотелия. Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний. 2024. Т. 13. № S3. С. 191-207. doi:10.17802/2306-1278-2024-13-3S-191-207.; Shishkova D, Markova V, Sinitsky M, Tsepokina A, Frolov A, Zagorodnikov N, Bogdanov L, Kutikhin A. Co-Culture of Primary Human Coronary Artery and Internal Thoracic Artery Endothelial Cells Results in Mutually Beneficial Paracrine Interactions. Int J Mol Sci. 2020;21(21):8032. doi:10.3390/ijms21218032.; Frolov A, Lobov A, Kabilov M, Zainullina B, Tupikin A, Shishkova D, Markova V, Sinitskaya A, Grigoriev E, Markova Y, Kutikhin A. Multi-Omics Profiling of Human Endothelial Cells from the Coronary Artery and Internal Thoracic Artery Reveals Molecular but Not Functional Heterogeneity. Int J Mol Sci. 2023;24(19):15032. doi:10.3390/ijms241915032.; Kutikhin AG, Tupikin AE, Matveeva VG, Shishkova DK, Antonova LV, Kabilov MR, Velikanova EA. Human Peripheral Blood-Derived Endothelial Colony-Forming Cells Are Highly Similar to Mature Vascular Endothelial Cells yet Demonstrate a Transitional Transcriptomic Signature. Cells. 2020;9(4):876. doi:10.3390/cells9040876.; Lindman BR, Clavel MA, Mathieu P, Iung B, Lancellotti P, Otto CM, Pibarot P. Calcific aortic stenosis. Nat Rev Dis Primers. 2016;2:16006. doi:10.1038/nrdp.2016.6.; Vogel B, Claessen BE, Arnold SV, Chan D, Cohen DJ, Giannitsis E, Gibson CM, Goto S, Katus HA, Kerneis M, Kimura T, Kunadian V, Pinto DS, Shiomi H, Spertus JA, Steg PG, Mehran R. ST-segment elevation myocardial infarction. Nat Rev Dis Primers. 2019;5(1):39. doi:10.1038/s41572-019-0090-3.; Kutikhin AG, Shishkova DK, Velikanova EA, Sinitsky MY, Sinitskaya AV, Markova VE. Endothelial Dysfunction in the Context of Blood-Brain Barrier Modeling. J Evol Biochem Physiol. 2022;58(3):781-806. doi:10.1134/S0022093022030139.; Jerka D, Bonowicz K, Piekarska K, Gokyer S, Derici US, Hindy OA, Altunay BB, Yazgan I, Steinbrink K, Kleszczyński K, Yilgor P, Gagat M. Unraveling Endothelial Cell Migration: Insights into Fundamental Forces, Inflammation, Biomaterial Applications, and Tissue Regeneration Strategies. ACS Appl Bio Mater. 2024;7(4):2054-2069. doi:10.1021/acsabm.3c01227.; Lee HW, Shin JH, Simons M. Flow goes forward and cells step backward: endothelial migration. Exp Mol Med. 2022;54(6):711-719. doi:10.1038/s12276-022-00785-1.; Kraler S, Libby P, Evans PC, Akhmedov A, Schmiady MO, Reinehr M, Camici GG, Lüscher TF. Resilience of the Internal Mammary Artery to Atherogenesis: Shifting From Risk to Resistance to Address Unmet Needs. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2021;41(8):2237-2251. doi:10.1161/ATVBAHA.121.316256.; Otsuka F, Yahagi K, Sakakura K, Virmani R. Why is the mammary artery so special and what protects it from atherosclerosis? Ann Cardiothorac Surg. 2013;2(4):519-26. doi:10.3978/j.issn.2225-319X.2013.07.06.; Yan F, Liu X, Ding H, Zhang W. Paracrine mechanisms of endothelial progenitor cells in vascular repair. Acta Histochem. 2022;124(1):151833. doi:10.1016/j.acthis.2021.151833.; Chong MS, Ng WK, Chan JK. Concise Review: Endothelial Progenitor Cells in Regenerative Medicine: Applications and Challenges. Stem Cells Transl Med. 2016;5(4):530-8. doi:10.5966/sctm.2015-0227.
-
4
Autoři:
Zdroj: World of Medicine : Journal of Biomedical Sciences; Vol. 2 No. 7 (2025): World of Medicine : Journal of Biomedical Sciences; 17-26 ; 2960-9356
Témata: пародонтит, системное воспаление, ревматоидный артрит, С-реактивный белок, провоспалительные цитокины
Popis souboru: application/pdf
-
5
Autoři: a další
Přispěvatelé: a další
Zdroj: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 29, № 1 (2025); 92-107 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 29, № 1 (2025); 92-107 ; 2500-3259 ; 10.18699/vjgb-25-01
Témata: поведение, Opisthorchis felineus infection, chronic ethanol consumption, liver, brain, microglia, proinflammatory cytokine, behavior, инфекция Opisthorchis felineus, хроническое потребление этанола, печень, мозг, микроглия, провоспалительные цитокины
Popis souboru: application/pdf
Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/4480/1918; Adeva M.M., Souto G., Donapetry C., Portals M., Rodriguez A., Lamas D. Brain edema in diseases of different etiology. Neurochem Int. 2012;61(2):166-174. doi:10.1016/j.neuint.2012.05.007; Akhmedov V.A., Kritevich M.A. Chronic opisthorchiasis is a multipleorgan pathology. Vestnik NGU. Seriya: Biologiya, Klinicheskaya Meditsina = Vestnik NSU. Series: Biology and Clinical Medicine. 2009;7(1):118-121. [https://nsu.ru/xmlui/bitstream/handle/nsu/4344/21.pdf] (in Russian); Avgustinovich D.F., Marenina M.K., Zhanaeva S.Y., Tenditnik M.V., Katokhin A.V., Pavlov K.S., Sivkov A.Y., Vishnivetskaya G.B., Lvova M.N., Tolstikova T.G., Mordvinov V.A. Combined effects of social stress and liver fluke infection in a mouse model. Brain Behav Immun. 2016;53:262-272. doi:10.1016/j.bbi.2016.01.012; Avgustinovich D., Kovner A., Kashina E., Shatskaya N., Vishnivetskaya G., Bondar N., Lvova M. The pathogenic potential of the combined action of chronic Opisthorchis felineus infection and repeated social defeat stress in C57BL/6 mice. Int J Parasit. 2021;51:353-363. doi:10.1016/j.ijpara.2020.10.003; Avgustinovich D., Kizimenko A., Marenina M., Lvova M., Kovner A., Orlovskaya I., Toporkova L., Goiman E., Tsyganov M., Ponomarev D. Prolonged liver fluke infection combined with alcoholization: an experimental mouse model. Exp Parasitol. 2022a;242: 108399. doi:10.1016/j.exppara.2022.108399; Avgustinovich D.F., Tenditnik M.V., Bondar N.P., Marenina M.K., Zhanaeva S.Y., Lvova M.N., Katokhin A.V., Pavlov K.S., Evseenko V.I., Tolstikova T.G. Behavioral effects and inflammatory markers in the brain and periphery after repeated social defeat stress burdened by Opisthorchis felineus infection in mice. Physiol Behav. 2022b;252:113846. doi:10.1016/j.physbeh.2022.113846; Bajaj J.S. Alcohol, liver disease and the gut microbiota. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 2019;16(4):235-246. doi:10.1038/s41575-018-0099-1; Belzung C. Hippocampal mossy fibres: implication in novelty reactions or in anxiety behaviours? Behav Brain Res. 1992;51(2):149-155. doi:10.1016/s0166-4328(05)80208-6; Bernstein D.E., Dickinson G.M., Kim K.-J., Al Karawi M.A., Barkin J.S. Parasitic causes of pancreatic and biliary tract disease: a growing concern in a highly mobile population. Mil Med. 1994; 159(4):331-338. doi:10.1093/milmed/159.4.331; Bilzer M., Roggel F., Gerbes A.L. Role of Kupffer cells in host defense and liver disease. Liver Int. 2006;26(10):1175-1186. doi:10.1111/j.1478-3231.2006.01342.x; Bishehsari F., Magno E., Swanson G., Desai V., Voigt R.M., Forsyth C.B., Keshavarzian A. Alcohol and gut-derived inflammation. Alcohol Res. 2017;38(2):163-171; Blednov Y.A., Bajo M., Roberts A.J., Da Costa A.J., Black M., Edmunds S., Mayfield J., Roberto M., Homanics G.E., Lasek A.W., Hitzemann R.J., Harris R.A. Scn4b regulates the hypnotic effects of ethanol and other sedative drugs. Genes Brain Behav. 2019;18(6): e12562. doi:10.1111/gbb.12562; Boonpucknavig S., Boonpucknavig V., Tanvanich S., Doungchawee G., Thamavit W. Development of immune-complex glomerulonephritis and amyloidosis in Syrian golden hamsters infected with Opisthorchis viverrini. J Med Assoc Thai. 1992;75(Suppl.1):7-19; Brown R.E., Willner J.A. Establishing an “affective scale” for odor preferences of infant rats. Behav Neural Biol. 1983;38(2):251-260. doi:10.1016/s0163-1047(83)90254-6; Butterworth R.F. Role of circulating neurotoxins in the pathogenesis of hepatic encephalopathy: potential for improvement following their removal by liver assist devices. Liver Int. 2003;23(Suppl.3):5-9. doi:10.1034/j.1478-3231.23.s.3.1.x; Bychkov V.G., Solov’eva O.G., Khadieva E.D., Ivanova L.A., Kulikova S.V., Garchuk I.V., Orlov S.A., Sabirov A.Kh., Shilin K.O., Beliaeva M.I. Morphogenesis of the structural changes of the internal organs in superinvasive opisthorchiasis. Morfologiia = Morphology. 2011;140(5):22-27 (in Russian); Chavarria L., Alonso J., Rovira A., Córdoba J. Neuroimaging in acute liver failure. Neurochem Int. 2011;59(8):1175-1180. doi:10.1016/j.neuint.2011.09.003; Chen W., Chen S., Kang W.Y., Li B., Xu Z.M., Xiao Q., Liu J., Wang Y., Wang G., Chen S.D. Application of odor identification test in Parkinson’s disease in China: a matched case-control study. J Neurol Sci. 2012;316(1-2):47-50. doi:10.1016/j.jns.2012.01.033; Choleris E., Thomas A.W., Kavaliers M., Prato F.S. A detailed ethological analysis of the mouse open field test: effects of diazepam, chlordiazepoxide and an extremely low frequency pulsed magnetic field. Neurosci Biobeh Rev. 2001;25(3):235-260. doi:10.1016/s0149-7634(01)00011-2; Collins M.A., Neafsey E.J. Neuroinflammatory pathways in binge alcohol-induced neuronal degeneration: oxidative stress cascade involving aquaporin, brain edema, and phospholipase A2 activation. Neurotox Res. 2012;21:70-78. doi:10.1007/s12640-011-9276-5; Collins M.A., Zou J.-Y., Neafsey E.J. Brain damage due to episodic alcohol exposure in vivo and in vitro: furosemide neuroprotection implicates edema-based mechanism. FASEB J. 1998;12(2):221-230. doi:10.1096/fasebj.12.2.221; de la Monte S.M., Kril J.J. Human alcohol-related neuropathology. Acta Neuropathol. 2014;127(1):71-90. doi:10.1007/s00401-013-1233-3; D’Mello C., Swain M.G. Liver-brain inflammation axis. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2011;301(5):G749-G761. doi:10.1152/ajpgi.00184.2011; Fernandez-Lizarbe S., Montesinos J., Guerri C. Ethanol induces TLR4/TLR2 association, triggering an inflammatory response in microglial cells. J Neurochem. 2013;126(2):261-273. doi:10.1111/jnc.12276; Fowler A.K., Thompson J., Chen L., Dagda M., Dertien J., Dossou K.S., Moaddel R., Bergeson S.E., Kruman I.I. Differential sensitivity of prefrontal cortex and hippocampus to alcohol-induced toxicity. PLoS One. 2014;9(9):e106945. doi:10.1371/journal.pone.0106945; Friard O., Gamba M. BORIS: a free, versatile open-source event-logging software for video/audio coding and live observations. Methods Ecol Evol. 2016;7:1325-1330. doi:10.1111/2041-210X.12584; Fu Y., Yang M.-S., Jiang J., Ganesh T., Joe E., Dingledine R. EP2 receptor signaling regulates microglia death. Mol Pharmacol. 2015; 88(1):161-170. doi:10.1124/mol.115.098202; Geil C.R., Hayes D.M., McClain J.A., Liput D.J., Marshall S.A., Chen K.Y., Nixon K. Alcohol and adult hippocampal neurogenesis: promiscuous drug, wanton effects. Prog Neuropsychopharmacol Biol Psychiatry. 2014;54:103-113. doi:10.1016/j.pnpbp.2014.05.003; Gundamaraju R., Vemuri R.C. Opisthorchis viverrini (liver fluke) as the lot of baleful parasite of tropical region - A replete synopsis. Asian Pac J Trop Dis. 2014;4(1):61-66. doi:10.1016/S2222-1808(14)60316-9; Harper C. The neuropathology of alcohol-specific brain damage, or does alcohol damage the brain? J Neuropathol Exp Neurol. 1998; 57(2):101-110. doi:10.1097/00005072-199802000-00001; Harper C. The neuropathology of alcohol-related brain damage. Alcohol Alcohol. 2009;44(2):136-140. doi:10.1093/alcalc/agn102; He J., Crews F.T. Increased MCP-1 and microglia in various regions of the human alcoholic brain. Exp Neurol. 2008;210(2):349-358. doi:10.1016/j.expneurol.2007.11.017; Henderson N.D., Turri M.G., DeFries J.C., Flint J. QTL analysis of multiple behavioral measures of anxiety in mice. Behav Genet. 2004;34(3):267-293. doi:10.1023/B:BEGE.0000017872.25069.44; Henriques J.F., Portugal C.C., Canedo T., Relvas J.B., Summavielle T., Socodato R. Microglia and alcohol meet at the crossroads: microglia as critical modulators of alcohol neurotoxicity. Toxicol Lett. 2018;283:21-31. doi:10.1016/j.toxlet.2017.11.002; Hoogland I.C., Houbolt C., van Westerloo D.J., van Gool W.A., van de Beek D. Systemic inflammation and microglial activation : systematic review of animal experiments. J Neuroinflammation. 2015; 12:114. doi:10.1186/s12974-015-0332-6; Huber V.J., Tsujita M., Yamazaki M., Sakimura K., Nakada T. Identification of arylsulfonamides as Aquaporin 4 inhibitors. Bioorg Med Chem Lett. 2007;17(5):1270-1273. doi:10.1016/j.bmcl.2006.12.010; Jayakumar A.R., Tong X.Y., Ospel J., Norenberg M.D. Role of cerebral endothelial cells in the astrocyte swelling and brain edema associated with acute hepatic encephalopathy. Neuroscience. 2012;218: 305-316. doi:10.1016/j.neuroscience.2012.05.006; Ketpueak T., Thiennimitr P., Apaijai N., Chattipakorn S.C., Chattipakorn N. Association of chronic opisthorchis infestation and microbiota alteration on tumorigenesis in cholangiocarcinoma. Clin Transl Gastroenterol. 2020;12(1):e00292. doi:10.14309/ctg.0000000000000292; Khan M.I., Nikoui V., Naveed A., Mumtaz F., Zaman H., Haider A., Aman W., Wahab A., Khan S.N., Ullah N., Dehpour A.R. Antidepressant-like effect of ethanol in mice forced swimming test is mediated via inhibition of NMDA/nitric oxide/cGMP signaling pathway. Alcohol. 2021;92:53-63. doi:10.1016/j.alcohol.2021.01.005; Kim B.Y., Park J.Y., Kim E.J., Kim B.G., Kim S.W., Kim S.W. The neuroplastic effect of olfactory training to the recovery of olfactory system in mouse model. Int Forum Allergy Rhinol. 2019;9(7):715-723. doi:10.1002/alr.22320; Korbo L. Glial cell loss in the hippocampus of alcoholics. Alcohol Clin Exp Res. 1999;23(1):164-168. doi:10.1111/j.1530-0277.1999.tb04039.x; Lowe P.P., Morel C., Ambade A., Iracheta-Vellve A., Kwiatkowski E., Satishchandran A., Furi I., Cho Y., Gyongyosi B., Catalano D., Lefeb vre E., Fischer L., Seyedkazemi S., Schafer D.P., Szabo G. Chronic alcohol-induced neuroinflammation involves CCR2/5-dependent peripheral macrophage infiltration and microglia alterations. J Neuroinflammation. 2020;17(1):296. doi:10.1186/s12974-020-01972-5; Lucki I. A prescription to resist proscriptions for murine models of depression. Psychopharmacology (Berl). 2001;153(3):395-398. doi:10.1007/s002130000561; Lvova M., Zhukova M., Kiseleva E., Mayboroda O., Hensbergen P., Kizilova E., Ogienko A., Besprozvannykh V., Sripa B., Katokhin A., Mordvinov V. Hemozoin is a product of heme detoxification in the gut of the most medically important species of the family Opisthorchiidae. Int J Parasitol. 2016;46(3):147-156. doi:10.1016/j.ijpara.2015.12.003; Lvova M.N., Shevelev O.B., Serdobintseva V.V., Kalinin D.V., Starostenko D.A., Zavjalov E.L., Krivoshapkin A.L., Logachev P.V., Mordvinov V.A., Avgustinovich D.F. Effect of silicon dioxide nanoparticles on Syrian hamsters infected by Opisthorchis felineus: 1H MRS study of the brain. Dokl Biochem Biophys. 2020;495(1): 319-324. doi:10.1134/S1607672920060095; Lvova M.N., Ponomarev D.V., Tarasenko A.A., Kovner A.V., Minkova G.A., Tsyganov M.A., Li M., Lou Y., Evseenko V.I., Dushkin A.V., Sorokina I.V., Tolstikova T.G., Mordvinov V.A., Avgustinovich D.F. Curcumin and its supramolecular complex with disodium glycyrrhizinate as potential drugs for the liver fluke infection caused by Opisthorchis felineus. Pathogens. 2023;12(6):819. doi:10.3390/pathogens12060819; Miller A.H., Maletic V., Raison C.L. Inflammation and its discontents: the role of cytokines in the pathophysiology of major depression. Biol Psychiatry. 2009;65(9):732-741. doi:10.1016/j.biopsych.2008.11.029; Mishchenko V.A., Goryukhina O.A., Ilyuk R.D. Changes in the bloodbrain barrier during experimental cirrhosis of the liver. Bull Exp Biol Med. 1993;116:1547-1550. doi:10.1007/BF00785497; Mordvinov V.A., Furman D.P. The digenea parasite Opisthorchis felineus: a target for the discovery and development of novel drugs. Infect Disord Drug Targets. 2010;10(5):385-401. doi:10.2174/187152610793180858; Murano T., Koshimizu H., Hagihara H., Miyakawa T. Transcriptomic immaturity of the hippocampus and prefrontal cortex in patients with alcoholism. Sci Rep. 2017;7:44531. doi:10.1038/srep44531; Norden D.M., Trojanowski P.J., Villanueva E., Navarro E., Godbout J.P. Sequential activation of microglia and astrocyte cytokine expression precedes increased Iba-1 or GFAP immunoreactivity following systemic immune challenge. Glia. 2016;64(2):300-316. doi:10.1002/glia.22930; Nunes P.T., Vedder L.C., Deak T., Savage L.M. A pivotal role for thiamine deficiency in the expression of neuroinflammation markers in models of alcohol-related brain damage. Alcohol Clin Exp Res. 2019;43(3):425-438. doi:10.1111/acer.13946; Pakharukova M.Y., Zaparina O.G., Kovner A.V., Mordvinov V.A. Inhibition of Opisthorchis felineus glutathione-dependent prostaglandin synthase by resveratrol correlates with attenuation of cholangiocyte neoplasia in a hamster model of opisthorchiasis. Int J Parasitol. 2019;49(12):963-973. doi:10.1016/j.ijpara.2019.07.002; Pakharukova M.Y., Lishai E.A., Zaparina O., Baginskaya N.V., Hong S.J., Sripa B., Mordvinov V.A. Opisthorchis viverrini, Clonorchis sinensis and Opisthorchis felineus liver flukes affect mammalian host microbiome in a species-specific manner. Cell Mol Life Sci. 2023;17(2):e0011111. doi:10.1371/journal.pntd.0011111; Paylor R., Crawley J.N. Inbred strain differences in prepulse inhibition of the mouse startle response. Psychopharmacology. 1997;132:169-180. doi:10.1007/s002130050333; Petney T.N., Andrews R.H., Saijuntha W., Wenz-Mücke A., Sithithaworn P. The zoonotic, fish-borne liver flukes Clonorchis sinensis, Opisthorchis felineus and Opisthorchis viverrini. Int J Parasitol. 2013;43(12-13):1031-1046. doi:10.1016/j.ijpara.2013.07.007; Porsolt R.D., Bertin A., Jalfre M. Behavioral despair in mice: a primary screening test for antidepressants. Arch Int Pharmacodyn Ther. 1977;229:327-336; Rama Rao K.V., Jayakumar A.R., Norenberg M.D. Brain edema in acute liver failure: mechanisms and concepts. Metab Brain Dis. 2014;29(4):927-936. doi:10.1007/s11011-014-9502-y; Ramos A., Mormède P. Stress and emotionality: a multidimensional and genetic approach. Neurosci Biobeh Rev. 1998;22(1):33-57. doi:10.1016/s0149-7634(97)00001-8; Saijuntha W., Sithithaworn P., Petney T.N., Andrews R.H. Foodborne zoonotic parasites of the family Opisthorchiidae. Res Vet Sci. 2021; 135:404-411. doi:10.1016/j.rvsc.2020.10.024; Saltykova I.V., Petrov V.A., Logacheva M.D., Ivanova P.G., Merzlikin N.V., Sazonov A.E., Ogorodova L.M., Brindley P.J. Biliary microbiota, gallstone disease and infection with Opisthorchis felineus. PLoS Negl Trop Dis. 2016;10(7):e0004809. doi:10.1371/journal.pntd.0004809; Seibenhener M.L., Wooten M.C. Use of the open field maze to measure locomotor and anxiety-like behavior in mice. J Vis Exp. 2015; (96):e52434. doi:10.3791/52434; Seki E., Schwabe R.F. Hepatic inflammation and fibrosis: functional links and key pathways. Hepatology. 2015;61(3):1066-1079. doi:10.1002/hep.27332; Silvin A., Ginhoux F. Microglia heterogeneity along a spatio-temporal axis: more questions than answers. Glia. 2018;66(10):2045-2057. doi:10.1002/glia.23458; Simon E., Obst J., Gomez-Nicola D. The evolving dialogue of microglia and neurons in Alzheimer’s disease: microglia as necessary transducers of pathology. Neuroscience. 2019;405:24-34. doi:10.1016/j.neuroscience.2018.01.059; Sripa B., Thinkhamrop B., Mairiang E., Laha T., Kaewkes S., Sithithaworn P., Periago M.V., Bhudhisawasdi V., Yonglitthipagon P., Mulvenna J., Brindley P.J., Loukas A., Bethony J.M. Elevated plasma IL-6 associates with increased risk of advanced fibrosis and cholangiocarcinoma in individuals infected by Opisthorchis viverrini. PLoS Negl Trop Dis. 2012;6(5):e1654. doi:10.1371/journal.pntd.0001654; Stephens A.S., Stephens S.R., Morrison N.A. Internal control genes for quantitative RT-PCR expression analysis in mouse osteoblasts, osteoclasts and macrophages. BMC Res Notes. 2011;4:410. doi:10.1186/1756-0500-4-410; Stickel F., Datz C., Hampe J., Bataller R. Pathophysiology and management of alcoholic liver disease: update 2016. Gut Liver. 2017;11(2): 173-188. doi:10.5009/gnl16477; Tan Y.L., Yuan Y., Tian L. Microglial regional heterogeneity and its role in the brain. Mol Psychiatry. 2020;25:351-367. doi:10.1038/s41380-019-0609-8; Upadhyay R.K. Stem cell therapeutics of acute liver diseases, transplantation, and regeneration. J Cell Sci Ther. 2017;8(4):1000275. doi:10.4172/2157-7013; Wang T., Chou D.Y., Ding J.Y., Fredrickson V., Peng C., Schafer S., Guthikonda M., Kreipke C., Rafols J.A., Ding Y. Reduction of brain edema and expression of aquaporins with acute ethanol treatment after traumatic brain injury. J Neurosurg. 2013;118(2):390-396. doi:10.3171/2012.8.JNS12736; Yang J.Y., Xue X., Tian H., Wang X.X., Dong Y.X., Wang F., Zhao Y.N., Yao X.C., Cui W., Wu C.F. Role of microglia in ethanol-induced neurodegenerative disease: pathological and behavioral dysfunction at different developmental stages. Pharmacol Ther. 2014;144(3): 321-337. doi:10.1016/j.pharmthera.2014.07.002; Yao H., Zhang D., Yu H., Yuan H., Shen H., Lan X., Liu H., Chen X., Meng F., Wu X., Zhang G., Wang X. Gut microbiota regulates chronic ethanol exposure-induced depressive-like behavior through hippocampal NLRP3-mediated neuroinflammation. Mol Psychiatry. 2023;28(2):919-930. doi:10.1038/s41380-022-01841-y; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/4480
-
6
Autoři: a další
Témata: coronary revascularization, myocardial remodeling, genetic polymorphism, proinflammatory cytokines, tumor necrosis factor-alpha, interleukin-6, interleukin-1, коронарная реваскуляризация, ремоделирование миокарда, генетический полиморфизм, провоспалительные цитокины, фактор некроза опухоли–альфа, интерлейкин-6, интерлейкин
-
7
Autoři:
Zdroj: THEORETICAL & APPLIED PROBLEMS OF AGRO-INDUSTRY. 55:39-45
-
8
Autoři: a další
Zdroj: Žurnal Grodnenskogo Gosudarstvennogo Medicinskogo Universiteta, Vol 21, Iss 5, Pp 460-465 (2023)
Témata: sars-cov-2, серологическая диагностика, провоспалительные цитокины, иммунный ответ, Medicine
Popis souboru: electronic resource
Relation: http://journal-grsmu.by/index.php/ojs/article/view/3090; https://doaj.org/toc/2221-8785; https://doaj.org/toc/2413-0109
Přístupová URL adresa: https://doaj.org/article/94940ece66454537a1546f9c257c78ee
-
9
Autoři: a další
Témata: coronary revascularization, myocardial remodeling, genetic polymorphism, proinflammatory cytokines, tumor necrosis factor-alpha, interleukin-6, interleukin-1, коронарная реваскуляризация, ремоделирование миокарда, генетический полиморфизм, провоспалительные цитокины, фактор некроза опухоли–альфа, интерлейкин-6, интерлейкин
Relation: https://zenodo.org/records/14552344; oai:zenodo.org:14552344; https://doi.org/10.5281/zenodo.14552344
-
10
Autoři: a další
Přispěvatelé: a další
Zdroj: Rheumatology Science and Practice; Vol 61, No 6 (2023); 744-750 ; Научно-практическая ревматология; Vol 61, No 6 (2023); 744-750 ; 1995-4492 ; 1995-4484
Témata: MCP-1, systemic lupus erythematosus, systemic scleroderma, monocyte activation, proinflammatory cytokines, TNF-α, IL-1β, системная красная волчанка, системная склеродермия, активация моноцитов, провоспалительные цитокины, ФНО-α, ИЛ-1β
Popis souboru: application/pdf
Relation: https://rsp.mediar-press.net/rsp/article/view/3474/2334; Kouchit Y, Morand L, Martis N. Mortality and its risk factors in critically ill patients with connective tissue diseases: A meta-analysis. Eur J Intern Med. 2022;98:83-92. doi:10.1016/j.ejim.2022.02.006; Насонов ЕЛ, Лила АМ, Дубинина ТВ, Никитинская ОА, Амирджанова ВН. К 60-летию журнала «Научно-практическая ревматология» Достижения ревматологии в начале XXI века. Научно-практическая ревматология. 2022;60(1): 5-20. doi:10.47360/1995-4484-2022-5-20; Ahsan H. Selfie: Autoimmunity, boon or bane. J Immunoassay Immunochem. 2017;38(3):235-246. doi:10.1080/15321819.2017.1319861; Yang S, Zhao M, Jia S. Macrophage: Key player in the pathogenesis of autoimmune diseases. Front Immunol. 2023;14;14:1080310. doi:10.3389/fimmu.2023.1080310; Насонов ЕЛ, Авдеева АС. Интерлейкин 18 при иммуновоспалительных ревматических заболеваниях и COVID-19. Научно-практическая ревматология. 2022;60(2):195-204. doi:10.47360/1995-4484-2022-195-204; Ma WT, Gao F, Gu K, Chen DK. The role of monocytes and macrophages in autoimmune diseases: A comprehensive review. Front Immunol. 2019;10:1140. doi:10.3389/fimmu.2019.01140; Navegantes KC, de Souza Gomes R, Pereira PAT, Czaikoski PG, Azevedo CHM, Monteiro MC. Immune modulation of some autoimmune diseases: The critical role of macrophages and neutrophils in the innate and adaptive immunity. J Transl Med. 2017;15(1):36. doi:10.1186/s12967-017-1141-8; Pang J, Koh TJ. Proliferation of monocytes and macrophages in homeostasis, infection, injury and disease. J Leukoc Biol. 2023;9:qiad093. doi:10.1093/jleuko/qiad093; Герасимова ЕВ, Попкова ТВ. Функциональные нарушения макрофагов при ревматоидном артрите и атеросклерозе. Научно-практическая ревматология. 2018;56(4):486-493. doi:10.14412/1995-4484-2018-486-493; Prajzlerová K, Kryštůfková O, Komarc M, Mann H, Hulejová H, Petrovská N, et al. The dysregulation of monocyte subpopulations in individuals at risk of developing rheumatoid arthritis. Rheumatology (Oxford). 2021;60(4):1823-1831. doi:10.1093/rheumatology/keaa518; Wang Y, Han CC, Cui D, Li Y, Ma Y, Wei W. Is macrophage polarization important in rheumatoid arthritis? Int Immunopharmacol. 2017;50:345-352. doi:10.1016/j.intimp.2017.07.019; Byrne JC, Ní Gabhann J, Lazzari E, Mahony R, Smith S, Stacey K, et al. Genetics of SLE: Functional relevance for monocytes/macrophages in disease. Clin Dev Immunol. 2012;2012:582352. doi:10.1155/2012/582352; Kwant LE, Vegting Y, Tsang-A-Sjoe MWP, Kwakernaak AJ, Vogt L, Voskuyl AE, et al. Macrophages in lupus nephritis: Exploring a potential new therapeutic avenue. Autoimmun Rev. 2022;21(12):103211. doi:10.1016/j.autrev.2022.103211; Higashi-Kuwata N, Jinnin M, Makino T, Fukushima S, Inoue Y, Muchemwa FC, et al. Characterization of monocyte/macrophage subsets in the skin and peripheral blood derived from patients with systemic sclerosis. Arthritis Res Ther. 2010;12(4):R128. doi:10.1186/ar3066; Aletaha D, Neogi T, Silman AJ, Funovits J, Felson DT, Bingham CO 3rd, et al. 2010 rheumatoid arthritis classification criteria: An American College of Rheumatology/European League Against Rheumatism collaborative initiative. Arthritis Rheum. 2010;62(9):2569-2581. doi:10.1002/art.27584; Petri M, Orbai AM, Alarcón GS, Gordon C, Merrill JT, Fortin PR, et al. Derivation and validation of the Systemic Lupus International Collaborating Clinics classification criteria for systemic lupus erythematosus. Arthritis Rheum. 2012;64(8):2677-2686. doi:10.1002/art.34473; van den Hoogen F, Khanna D, Fransen J, Johnson SR, Baron M, Tyndall A, et al. 2013 classification criteria for systemic sclerosis: An American college of rheumatology/European league against rheumatism collaborative initiative. Ann Rheum Dis. 2013;72(11): 1747-1755. doi:10.1136/annrheumdis-2013-204424; Crayne CB, Albeituni S, Nichols KE, Cron RQ. The immunology of macrophage activation syndrome. Front Immunol. 2019;10:119. doi:10.3389/fimmu.2019.00119; Goldring SR. Pathogenesis of bone erosions in rheumatoid arthritis. Curr Opin Rheumatol. 2002;14(4):406-410. doi:10.1097/00002281-200207000-00013; Lama M, Sarkar R, Ghosh B. Serum cytokine profiles in patients with rheumatoid arthritis before and after treatment with methotrexate. J Interferon Cytokine Res. 2023;43(8):344-350. doi:10.1089/jir.2023.0078; Лапкина НА, Баранов АА, Абайтова НЕ, Левшин НЮ, Авдеева АС, Леонтьева ЕА, и др. Динамика клинических проявлений и концентрации цитокинов у больных ревматоидным артритом на фоне терапии тофацитинибом. Научно-практическая ревматология. 2021;59(6):693-699. doi:10.47360/1995-4484-2021-693-699; Pehlivan Y, Onat AM, Ceylan N, Turkbeyler IH, Buyukhatipoglu H, Comez G, et al. Serum leptin, resistin and TNF-α levels in patients with systemic sclerosis: The role of adipokines in scleroderma. Int J Rheum Dis. 2012;15(4):374-379. doi:10.1111/j.1756-185X.2012.01755.x; Zhao R, Zhou H, Su SB. A critical role for interleukin-1β in the progression of autoimmune diseases. Int Immunopharmacol. 2013;17(3):658-669. doi:10.1016/j.intimp.2013.08.012; Voronov E, Dayan M, Zinger H, Gayvoronsky L, Lin JP, Iwakura Y, et al. IL-1 beta-deficient mice are resistant to induction of experimental SLE. Eur Cytokine Netw. 2006;17(2):109-116.; Italiani P, Manca ML, Angelotti F, Melillo D, Pratesi F, Puxeddu I, et al. IL-1 family cytokines and soluble receptors in systemic lupus erythematosus. Arthritis Res Ther. 2018;20(1):27. doi:10.1186/s13075-018-1525-z; Mähönen K, Hau A, Bondet V, Duffy D, Eklund KK, Panelius J, et al. Activation of NLRP3 inflammasome in the skin of patients with systemic and cutaneous lupus erythematosus. Acta Derm Venereol. 2022;102:adv00708. doi:10.2340/actadv.v102.2293; Moadab F, Khorramdelazad H, Abbasifard M. Role of CCL2/ CCR2 axis in the immunopathogenesis of rheumatoid arthritis: Latest evidence and therapeutic approaches. Life Sci. 2021;269:119034. doi:10.1016/j.lfs.2021.119034; Kuuliala K, Kuuliala A, Hämäläinen M, Koivuniemi R, Kautiainen H, Moilanen E, et al. Impaired Akt phosphorylation in monocytes of patients with rheumatoid arthritis. Scand J Immunol. 2017;85(2):155-161. doi:10.1111/sji.12521
-
11
Autoři: a další
Zdroj: Meditsinskiy sovet = Medical Council; № 2 (2024); 113-120 ; Медицинский Совет; № 2 (2024); 113-120 ; 2658-5790 ; 2079-701X
Témata: глицирризиновая кислота, psoriasis, comorbidity, proinflammatory cytokines, adipokines, increased intestinal permeability, essential phospholipids, glycyrrhizic acid, псориаз, коморбидность, провоспалительные цитокины, адипокины, повышенная кишечная проницаемость, эссенциальные фосфолипиды
Popis souboru: application/pdf
Relation: https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/8135/7182; Хайрутдинов ВР, Самцов АВ. Псориаз. Современные представления о дерматозе: руководство для врачей. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2021. 260 с. https://doi.org/10.33029/9704-6384-0-PSO-2021-1-260.; Danielsen K, Olsen AO, Wilsgaard T, Furberg AS. Is the prevalence of psoriasis increasing? A 30-year follow-up of a population-based cohort. Br J Dermatol. 2013;168(6):1303–1310 https://doi.org/10.1111/bjd.12230.; Kubota K, Kamijima Y, Sato T, Ooba N, Koide D, Iizuka H, Nakagawa H. Epidemiology of psoriasis and palmoplantar pustulosis: a nationwide study using the Japanese national claims database. BMJ Open. 2015;5(1):e006450. https://doi.org/10.1136/bmjopen-2014-006450.; Green AC. Australian Aborigines and psoriasis. Australas J Dermatol. 1984;25(1):18–24. https://doi.org/10.1111/j.1440-0960.1984.tb00618.x.; Huerta C, Rivero E, Rodríguez LA. Incidence and risk factors for psoriasis in the general population. Arch Dermatol. 2007;143(12):1559–1565. https://doi.org/10.1001/archderm.143.12.1559.; Драпкина ОМ, Ивашкин ВТ. Эпидемиологические особенности неалкогольной жировой болезни печени в России (результаты открытого многоцентрового проспективного исследования наблюдения DIREGL 01903). Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии и колопроктологии. 2014;24(4):32–38. Режим доступа: https://old-gastro-j.ru/article/579-h2-epidemiologicheskie-osobennosti-nealkogolnoy-zhirovoy-bolezni-pecheni-v-rossii-br-h2-i-rezult/show/full/.; Хамаганова ИВ, Алмазова АА, Лебедева ГА, Ермаченко АВ. Проблемы эпидемиологии псориаза. Клиническая дерматология и венерология. 2015;14(1):12–21. https://doi.org/10.17116/klinderma2015112-16.; Денисова Е, Дворянкова Е, Дениева М, Соболев В, Корсунская И. Обоснование применения гепатопротекторов при псориазе. Врач. 2018;29(9):85–88. Режим доступа: https://vrachjournal.ru/ru/25877305-2018-09-20.; Корсакова ЮЛ, Коротаева ТВ. Поражение печени при псориазе и псориатическом артрите: обзор литературы. Научно-практическая ревматология. 2017;55(4):429–435. https://doi.org/10.14412/1995-4484-2017-429-435.; Ganzetti G, Campanati A, Offidani A. Non-alcoholic fatty liver disease and psoriasis: So far, so near. World J Hepatol. 2015;7(3):315–326. https://doi.org/10.4254/wjh.v7.i3.315.; Lonardo A, Loria P, Carulli N. Concurrent non-alcoholic steatohepatitis and psoriasis. Report of three cases from the POLI.ST.E.N.A. study. Dig Liver Dis. 2001;33(1):86–87. https://doi.org/10.1016/s1590-8658(01)80144-4.; Matsumoto T, Suzuki N, Watanabe H, Irie M, Iwata K, Anan A et al. Nonalcoholic steatohepatitis associated with psoriasis vulgaris. J Gastroenterol. 2004;39(11):1102–1105. https://doi.org/10.1007/s00535-004-1451-5.; Gisondi P, Targher G, Zoppini G, Girolomoni G. Non-alcoholic fatty liver disease in patients with chronic plaque psoriasis. J Hepatol. 2009;51(4):758–764. https://doi.org/10.1016/j.jhep.2009.04.020.; Miele L, Vallone S, Cefalo C, La Torre G, Di Stasi C, Vecchio FM et al. Prevalence, characteristics and severity of non-alcoholic fatty liver disease in patients with chronic plaque psoriasis. J Hepatol. 2009;51(4):778–786. https://doi.org/10.1016/j.jhep.2009.06.008.; van der Voort EA, Koehler EM, Dowlatshahi EA, Hofman A, Stricker BH, Janssen HL et al. Psoriasis is independently associated with nonalcoholic fatty liver disease in patients 55 years old or older: Results from a population-based study. J Am Acad Dermatol. 2014;70(3):517–524. https://doi.org/10.1016/j.jaad.2013.10.044.; van der Voort EA, Koehler EM, Nijsten T, Stricker BH, Hofman A, Janssen HL et al. Increased Prevalence of Advanced Liver Fibrosis in Patients with Psoriasis: A Cross-sectional Analysis from the Rotterdam Study. Acta Derm Venereol. 2016;96(2):213–217. https://doi.org/10.2340/00015555-2161.; Roberts KK, Cochet AE, Lamb PB, Brown PJ, Battafarano DF, Brunt EM et al. The prevalence of NAFLD and NASH among patients with psoriasis in a tertiary care dermatology and rheumatology clinic. Aliment Pharmacol Ther. 2015;41(3):293–300. https://doi.org/10.1111/apt.13042.; Candia R, Ruiz A, Torres-Robles R, Chávez-Tapia N, Méndez-Sánchez N, Arrese M. Risk of non-alcoholic fatty liver disease in patients with psoriasis: a systematic review and meta-analysis. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2015;29(4):656–662. https://doi.org/10.1111/jdv.12847.; Byrne CD, Targher G. NAFLD: a multisystem disease. J Hepatol. 2015;62(1 Suppl):S47–S64. https://doi.org/10.1016/j.jhep.2014.12.012.; Birkenfeld AL, Shulman GI. Nonalcoholic fatty liver disease, hepatic insulin resistance, and type 2 diabetes. Hepatology. 2014;59(2):713–723. https://doi.org/10.1002/hep.26672.; Coimbra S, Catarino C, Santos-Silva A. The triad psoriasis-obesity-adipokine profile. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2016;30(11):1876–1885. https://doi.org/10.1111/jdv.13701.; Campanati A, Ganzetti G, Giuliodori K, Marra M, Bonfigli A, Testa R, Offidani A. Serum levels of adipocytokines in psoriasis patients receiving tumor necrosis factor-α inhibitors: results of a retrospective analysis. Int J Dermatol. 2015;54(7):839–845. https://doi.org/10.1111/ijd.12706.; Гаус ОВ, Ахмедов ВА. Влияние метаболического синдрома на состояние паренхимы печени и билиарной системы у пациентов с желчнокаменной болезнью. Уральский медицинский журнал. 2015;1(124):132–137. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=23137068.; Stefan N, Häring HU. The role of hepatokines in metabolism. Nat Rev Endocrinol. 2013;9(3):144–152. https://doi.org/10.1038/nrendo.2012.258.; Hunter CA, Jones SA. IL-6 as a keystone cytokine in health and disease. Nat Immunol. 2015;16(5):448–457. https://doi.org/10.1038/ni.3153.; Kiełbowski K, Bakinowska E, Ostrowski P, Pala B, Gromowska E, Gurazda K et al. The Role of Adipokines in the Pathogenesis of Psoriasis. Int J Mol Sci. 2023;24(7):6390. https://doi.org/10.3390/ijms24076390.; Farkhondeh T, Llorens S, Pourbagher-Shahri AM, Ashrafizadeh M, Talebi M, Shakibaei M, Samarghandian S. An Overview of the Role of Adipokines in Cardiometabolic Diseases. Molecules. 2020;25(21):5218. https://doi.org/10.3390/molecules25215218.; Ливзан МА, Лаптева ИВ, Миллер ТС. Роль лептина и лептинорезистентности в формировании неалкогольной жировой болезни печени у лиц с ожирением и избыточной массой тела. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2014;108(8):27–33. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=22593043.; Kovács D, Fazekas F, Oláh A, Törőcsik D. Adipokines in the Skin and in Dermatological Diseases. Int J Mol Sci. 2020;21(23):9048. https://doi.org/10.3390/ijms21239048.; Gerdes S, Rostami-Yazdi M, Mrowietz U. Adipokines and psoriasis. Exp Dermatol. 2011;20(2):81–87. https://doi.org/10.1111/j.1600-0625.2010.01210.x.; Kaur S, Zilmer K, Kairane C, Kals M, Zilmer M. Clear differences in adiponectin level and glutathione redox status revealed in obese and normal-weight patients with psoriasis. Br J Dermatol. 2008;159(6):1364–1367. https://doi.org/10.1111/j.1365-2133.2008.08759.x.; Kyriakou A, Patsatsi A, Sotiriadis D, Goulis DG. Serum Leptin, Resistin, and Adiponectin Concentrations in Psoriasis: A Meta-Analysis of Observational Studies. Dermatology. 2017;233(5):378–389. https://doi.org/10.1159/000481882.; Lynch M, Ahern T, Sweeney CM, Malara A, Tobin AM, O’Shea D, Kirby B. Adipokines, psoriasis, systemic inflammation, and endothelial dysfunction. Int J Dermatol. 2017;56(11):1103–1118. https://doi.org/10.1111/ijd.13699.; Camilleri M. Leaky gut: mechanisms, measurement and clinical implications in humans. Gut. 2019;68(8):1516–1526. https://doi.org/10.1136/gutjnl-2019-318427.; Gómez-Hurtado I, Gallego-Durán R, Zapater P, Ampuero J, Aller R, Crespo J et al. Bacterial antigen translocation and age as BMI-independent contributing factors on systemic inflammation in NAFLD patients. Liver Int. 2020;40(9):2182–2193. https://doi.org/10.1111/liv.14571.; Ахмедов ВА, Гаус ОВ. Роль кишечной микробиоты в формировании неалкогольной жировой болезни печени. Терапевтический архив. 2019;91(2):143–148. https://doi.org/10.26442/00403660.2019.02.000051.; Tilg H, Zmora N, Adolph TE, Elinav E. The intestinal microbiota fuelling metabolic inflammation. Nat Rev Immunol. 2020;20(1):40–54. https://doi.org/10.1038/s41577-019-0198-4.; Prussick RB, Miele L. Nonalcoholic fatty liver disease in patients with psoriasis: a consequence of systemic inflammatory burden? Br J Dermatol. 2018;179(1):16–29. https://doi.org/10.1111/bjd.16239.; Екимов ИН, Правдина ОВ. Роль повреждения кишечного барьера в развитии псориаза. Медицинский алфавит. 2021;(35):34–37. https://doi.org/10.33667/2078-5631-2021-35-34-37.; Лазебник ЛБ, Голованова ЕВ, Туркина СВ, Райхельсон КЛ, Оковитый СВ, Драпкина ОМ и др. Неалкогольная жировая болезнь печени у взрослых: клиника, диагностика, лечение. Рекомендации для терапевтов, третья версия. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2021;1(1):4–52. https://doi.org/10.31146/1682-8658-ecg-185-1-4-52.; Richetta AG, Grassi S, Moliterni E, Chello C, Calvieri C, Carnevale R et al. Increased intestinal barrier permeability in patients with moderate to severe plaque-type psoriasis. J Dermatol. 2020;47(10):e366–e368. https://doi.org/10.1111/1346-8138.15361.; Sikora M, Chrabąszcz M, Maciejewski C, Zaremba M, Waśkiel A, Olszewska M, Rudnicka L. Intestinal barrier integrity in patients with plaque psoriasis. J Dermatol. 2018;45(12):1468–1470. https://doi.org/10.1111/1346-8138.14647.; Sikora M, Stec A, Chrabaszcz M, Giebultowicz J, Samborowska E, Jazwiec R et al. Clinical Implications of Intestinal Barrier Damage in Psoriasis. J Inflamm Res. 2021;(14):237–243. https://doi.org/10.2147/JIR.S292544.; Nowiński A, Ufnal M. Trimethylamine N-oxide: A harmful, protective or diagnostic marker in lifestyle diseases? Nutrition. 2018;(46):7–12. https://doi.org/10.1016/j.nut.2017.08.001.; Ufnal M, Zadlo A, Ostaszewski R. TMAO: A small molecule of great expectations. Nutrition. 2015;31(11–12):1317–1323. https://doi.org/10.1016/j.nut.2015.05.006 .; Farhangi MA, Vajdi M. Novel findings of the association between gut microbiota-derived metabolite trimethylamine N-oxide and inflammation: results from a systematic review and dose-response meta-analysis. Crit Rev Food Sci Nutr. 2020;60(16):2801–2823. https://doi.org/10.1080/10408398.2020.1770199.; Dehghan P, Farhangi MA, Nikniaz L, Nikniaz Z, Asghari-Jafarabadi M. Gut microbiota-derived metabolite trimethylamine N-oxide (TMAO) potentially increases the risk of obesity in adults: An exploratory systematic review and dose-response meta-analysis. Obes Rev. 2020;21(5):e12993. https://doi.org/10.1111/obr.12993.; León-Mimila P, Villamil-Ramírez H, Li XS, Shih DM, Hui ST, Ocampo-Medina E et al. Trimethylamine N-oxide levels are associated with NASH in obese subjects with type 2 diabetes. Diabetes Metab. 2021;47(2):101183. https://doi.org/10.1016/j.diabet.2020.07.010.; Nast A, Gisondi P, Ormerod AD, Saiag P, Smith C, Spuls PI et al. European S3-Guidelines on the systemic treatment of psoriasis vulgaris – Update 2015 – Short version – EDF in cooperation with EADV and IPC. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2015;29(12):2277–2294. https://doi.org/10.1111/jdv.13354.; Ливзан МА, Гаус ОВ, Николаев НА, Кролевец ТС. НАЖБП: коморбидность и ассоциированные заболевания. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2019;1(10):57–65. https://doi.org/10.31146/1682-8658-ecg-170-10-57-65.; Gisondi P, Galvan A, Idolazzi L, Girolomoni G. Management of moderate to severe psoriasis in patients with metabolic comorbidities. Front Med (Lausanne). 2015;(2):1. https://doi.org/10.3389/fmed.2015.00001.; Hardwick RN, Clarke JD, Lake AD, Canet MJ, Anumol T, Street SM et al. Increased susceptibility to methotrexate-induced toxicity in nonalcoholic steatohepatitis. Toxicol Sci. 2014;142(1):45–55. https://doi.org/10.1093/toxsci/kfu156.; Rosenberg P, Urwitz H, Johannesson A, Ros AM, Lindholm J, Kinnman N, Hultcrantz R. Psoriasis patients with diabetes type 2 are at high risk of developing liver fibrosis during methotrexate treatment. J Hepatol. 2007;46(6):1111–1118. https://doi.org/10.1016/j.jhep.2007.01.024.; Rinella ME, Lazarus JV, Ratziu V, Francque SM, Sanyal AJ, Kanwal F et al. A multisociety Delphi consensus statement on new fatty liver disease nomenclature. Hepatology. 2023;78(6):1966–1986. https://doi.org/10.1097/HEP.0000000000000520.; Gisondi P, Cazzaniga S, Chimenti S, Giannetti A, Maccarone M, Picardo M et al. Metabolic abnormalities associated with initiation of systemic treatment for psoriasis: evidence from the Italian Psocare Registry. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2013;27(1):e30–e41. https://doi.org/10.1111/j.1468-3083.2012.04450.x.; Neuvonen PJ, Niemi M, Backman JT. Drug interactions with lipid-lowering drugs: mechanisms and clinical relevance. Clin Pharmacol Ther. 2006;80(6):565–581. https://doi.org/10.1016/j.clpt.2006.09.003.; Dunn LK, Gaar LR, Yentzer BA, O’Neill JL, Feldman SR. Acitretin in dermatology: a review. J Drugs Dermatol. 2011;10(7):772–782. Available at: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21720660/.; Brownstone ND, Hong J, Mosca M, Hadeler E, Liao W, Bhutani T, Koo J. Biologic Treatments of Psoriasis: An Update for the Clinician. Biologics. 2021;(15):39–51. https://doi.org/10.2147/BTT.S252578.; Lestre S, Diamantino F, Veloso L, Fidalgo A, Ferreira A. Effects of etanercept treatment on lipid profile in patients with moderate-to-severe chronic plaque psoriasis: a retrospective cohort study. Eur J Dermatol. 2011;21(6):916–920. https://doi.org/10.1684/ejd.2011.1548.; Tobon GJ, Cañas C, Jaller JJ, Restrepo JC, Anaya JM. Serious liver disease induced by infliximab. Clin Rheumatol. 2007;26(4):578–581. https://doi.org/10.1007/s10067-005-0169-y.; Jingze Z, Wenyuan G, Shufang B, Hong C, Qianqian Q, Zhen L. Glycyrrhizic Acid-Phospholipid Complex: Preparation Process Optimization and Therapeutic and Pharmacokinetic Evaluation in Rats. Lat Am J Pharm. 2011;30(8):1621–1630. Available at: https://www.researchgate.net/publication/285759098_Glycyrrhizic_Acid-Phospholipid_Complex_Preparation_Process_Optimization_and_Therapeutic_and_Pharmacokinetic_Evaluation_in_Rats; Воскресенская АА, Медведева НВ, Прозоровский ВН, Москалева НЕ, Ипатова ОМ. Особенности всасывания глицирризиновой кислоты в составе лекарственного препарата фосфоглив. Биомедицинская химия. 2012;58(5):564–572 https://doi.org/10.18097/PBMC20125805564.; Xiao-peng S, Ran-ran S, Xue-qiang Yu. Effect of glycyrrhizin on expression of TNF-α, IL-1 and IL-6 in adjuvant arthritis rat. Heilongjiang Med Pharm. 2011;34(1). Available at: https://en.cnki.com.cn/Article_en/CJFDTOTALKXJY201101015.htm.; Crance JM, Lévêque F, Biziagos E, van Cuyck-Gandré H, Jouan A, Deloince R. Studies on mechanism of action of glycyrrhizin against hepatitis A virus replication in vitro. Antiviral Res. 1994;23(1):63–76. https://doi.org/10.1016/0166-3542(94)90033-7.; van Rossum TG, Vulto AG, de Man RA, Brouwer JT, Schalm SW. Review article: glycyrrhizin as a potential treatment for chronic hepatitis C. Aliment Pharmacol Ther. 1998;12(3):199–205. https://doi.org/10.1046/j.1365-2036.1998.00309.x.; Honda H, Nagai Y, Matsunaga T, Saitoh S, Akashi-Takamura S, Hayashi H et al. Glycyrrhizin and isoliquiritigenin suppress the LPS sensor toll-like receptor 4/MD-2 complex signaling in a different manner. J Leukoc Biol. 2012;91(6):967–976. https://doi.org/10.1189/jlb.0112038.; Ивашкин ВТ, Бакулин ИГ, Богомолов ПО, Мациевич МВ, Гейвандова НИ, Корой ПВ и др. Результаты многоцентрового двойного слепого рандомизированного плацебоконтролируемого пострегистрационного (IV фаза) клинического исследования «Гепард» (PHG-M2/P02–12), проведенного с целью оценки эффективности и безопасности комбинированного препарата глицирризиновой кислоты и эссенциальных фосфолипидов (Фосфоглив) при неалкогольной жировой болезни печени. Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии. 2017;27(2):34–43. https://doi.org/10.22416/1382-4376-2017-27-2-34-43.; Mantani N, Oka H, Sahashi Y, Suzuki A, Ayabe M, Suzuki M et al. Relationship between incidence of pseudoaldosteronism and daily dose of Glycyrrhiza: review of the literature. Kampo Med. 2015;(66):197–202. https://doi.org/10.3937/kampomed.66.197.
-
12
Autoři: a další
Zdroj: Russian Journal of Infection and Immunity; Vol 14, No 3 (2024); 423-428 ; Инфекция и иммунитет; Vol 14, No 3 (2024); 423-428 ; 2313-7398 ; 2220-7619
Témata: IL-18, IL-33, interleukins, expression, COVID-19, cytokine storm, mucosal immune, proinflammatory cytokines, экспрессия, цитокиновый шторм, мукозальный иммунитет, провоспалительные цитокины
Popis souboru: application/pdf
-
13
Autoři: a další
Přispěvatelé: a další
Zdroj: General Reanimatology; Том 20, № 4 (2024); 23-29 ; Общая реаниматология; Том 20, № 4 (2024); 23-29 ; 2411-7110 ; 1813-9779
Témata: провоспалительные цитокины, cytokine hemoadsorption, Efferon CT, organ failure, proinflammatory cytokines, цитокиновая гемосорбция, органная недостаточность
Popis souboru: application/pdf
Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2506/1852; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2506/1859; Ревишвили А.Ш., Кубышкин В.А., Затевахин И.И., Багненко С.Ф., Полушин Ю.С., Майстренко Н.А., с соавт. (рабочая группа). Острый панкреатит. Клинические рекомендации. Версия Сентябрь 2020. Дата обращения 02 апреля 2024. URL: http://общество-хирургов.рф/stranica-pravlenija/klinicheskie-rekomendaci/urgentnaja-abdominalnaja-hirurgija/ostryi-pankreatit-versija-sentjabr-2020.html; Banks P.A., Bollen T.L., Dervenis C., Gooszen H.G., Johnson C.D., Sarr M.G., Acute Pancreatitis Classification Working Group. Classification of acute pancreatitis—2012: revision of the Atlanta classification and definitions by international consensus. Gut. 2013; 62 (1): 102–111. DOI:10.1136/gutjnl2012-302779. PMID: 23100216.; Harrison D.A., D’Amico G., Singer M. The pancreatitis outcome prediction (POP) score: a new prognostic index for patients with severe acute pancreatitis. Crit Care Med. 2007; 35 (7): 1703–1708. DOI:10.1097/01.CCM.0000269031.13283.C8. PMID: 17522578.; Zhang H., Neuhofer P., Song L., Rabe B., Lesina M., Kurkowski M.U., Treiber М., et al. IL-6 trans-signaling promotes pancreatitis-associated lung injury and lethality. J Clin Invest. 2013; 123 (3): 1019–1031. DOI:10.1172/JCI64931. PMID: 23426178.; Phillip V., Steiner J.M., Algul H. Early phase of acute pancreatitis: assessment and management. World J Gastrointest Pathophysiol. 2014; 5 (3): 158–168. DOI:10.4291/wjgp.v5.i3.158. PMID: 25133018.; Марухов А.В., Хорошилов С.Е., Захаров М.В., Никулин А.В., Чубченко Н.В. Применение экстракорпоральной детоксикации в комплексном лечении тяжелого острого панкреатита. Анестезиология и реаниматология. 2020; (5): 23–29. DOI:10.17116/anaesthesiology202005123.; Писарев В.М., Чумаченко А.Г., Филев А.Д., Ершова Е.С., Костюк С.В.,Вейко Н.Н.,с соавт. Комбинация молекулярных биомаркеров ДНК в прогнозе исхода критических состояний. Общая реаниматология. 2019; 15 (3): 31–47. DOI:10.15360/1813-9779-2019-3-31-47.; Хорошилов С.Е., Никулин А.В. Эфферентное лечение критических состояний. Общая реаниматология. 2012; 8 (4): 30. DOI:10.15360/1813-9779-2012-4-30.; Johnson C.D., Kingsnorth A.N., Imrie C.W., McMahon M.J., Neoptolemos J.P., McKay C., Toh S.K., et al. Double blind, randomised, placebo controlled study of a platelet activating factor antagonist, lexipafant, in the treatment and prevention of organ failure in predicted severe acute pancreatitis. Gut. 2001; 48 (1): 62–69. DOI:10.1136/gut.48.1.62. PMID: 11115824.; Siriwardena A.K., Mason J.M., Balachandra S., Bagul A., Galloway S., Formela L., Hardman J.G., et al Randomised, double blind, placebo controlled trial of intravenous antioxidant (n-acetylcysteine, selenium, vitamin C) therapy in severe acute pancreatitis. Gut. 2007; 56 (10): 1439–1444. DOI:10.1136/gut.2006.115873. PMID: 17356040.; Kade G., Lubas A., Rzeszotarska A., Korsak J., Niemczyk S. Effectiveness of high cut-off hemofilters in the removal of selected cytokines in patients during septic shock accompanied by acute kidney injury-preliminary study. Med Sci Monit. 2016; 22: 4338–4344. DOI:10.12659/MSM.896819. PMID: 27840404.; Kade G., Literacki S., Rzeszotarska A., Niemczyk S., Lubas A. Removal of procalcitonin and selected cytokines during continuous veno-venous hemodialysis using high cutoff hemofilters in patients with sepsis and acute kidney injury. Blood Purif. 2018; 46 (2): 153–159. DOI:10.1159/000488929. PMID: 29705804.; Villa G., Chelazzi C., Morettini E., Zamidei L., Valente S., Caldini A.L., Zagli G., et al. Organ dysfunction during continuous veno-venous high cut-off hemodialysis in patients with septic acute kidney injury: a prospective observational study. PLoS One. 2017; 12 (2): e0172039. DOI:10.1371/journal.pone.0172039. PMID: 28207795.; Kade G., Literacki S., Rzeszotarska A., Niemczyk S., Lubas A. Inflammatory markers during continuous high cutoff hemodialysis in patients with septic shock and acute kidney injury. Adv Exp Med Biol. 2020; 1251: 71–80. DOI:10.1007/5584_2019_458. PMID: 31919709.; Chelazzi C., Villa G., D’Alfonso M.G., Mancinelli P., Consales G., Berardi M., De Gaudio A.R., et al. Hemodialysis with high cut-off hemodialyzers in patients with multi-drug resistant gram-negative sepsis and acute kidney injury: a retrospective, case-control study. Blood Purif. 2016; 42 (3): 186–193. DOI:10.1159/000446978 PMID: 27352068.; Kamei J., Kanamoto M., Igarashi Y., Suzuki K., Fujita K., Kuwana T., Ogura T., et al, J-Stad Japan Sepsis Treatment And Diagnosis Study Group. Blood purification in patients with sepsis associated with acute kidney injury: a narrative review. J Clin Med. 2023; 12 (19): 6388. DOI:10.3390/jcm12196388. PMID: 37835031.; Yin F., Zhang F., Liu S., Ning B. The therapeutic effect of high-volume hemofiltration on sepsis: a systematic review and meta-analysis. Ann Transl Med. 2020; 8 (7): 488. DOI:10.21037/atm.2020.03.48. PMID: 32395532.; Kellum J.A., Venkataraman R., Powner D., Elder M., Hergenroeder G., Carter M. Feasibility study of cytokine removal by hemoadsorption in brain-dead humans. Crit Care Med. 2008; 36 (1): 268–272. DOI:10.1097/01.CCM.0000291646.34815.BB. PMID: 18090355.; Trager K., Fritzler D., Fischer G., Schroder J., Skrabal C., Liebold A., Reinelt H. Treatment of post-cardiopulmonary bypass SIRS by hemoadsorption: a case series. Int J Artif Organs. 2016; 39 (3): 141–146. DOI:10.5301/ijao.5000492. PMID: 27140295.; Friesecke S., Stecher S.S., Gross S., Felix S.B., Nierhaus A. Extracorporeal cytokine elimination as rescue therapy in refractory septic shock: a prospective single-center study. J Artif Organs. 2017; 20 (3): 252–259. DOI:10.1007/s10047017-0967-4. PMID: 28589286.; Houschyar K.S., Pyles M.N., Rein S., Nietzschmann I., Duscher D., Maan Z.N., Weissenberg K., et al. Continuous hemoadsorption with a cytokine adsorber during sepsis — a review of the literature. Int J Artif Organs. 2017; 40 (5): 205–211. DOI:10.5301/ijao.5000591. PMID: 28525674.; Kogelmann K., Jarczak D., Scheller M., Druner M. Hemoadsorption by CytoSorb in septic patients: a case series. Crit Care. 2017; 21 (1): 74. DOI:10.1186/s13054-017-1662-9. PMID: 28343448.; Ковзель В.А., Давыдова Л.А., Карзин А.В., Царенко С.В., Батурова В.Ю., Полупан А.А., Гутников А.И. Методы экстракорпоральной гемокоррекции при сепсисе (обзор). Общая реаниматология. 2023; 19 (2): 68-82. DOI:10.15360/1813-9779-2023-2-2282.; Rasch S., Sancak S., Erber J., Wießner J., Schulz D., Huberle C., Algül H., et al. Influence of extracorporeal cytokine adsorption on hemodynamics in severe acute pancreatitis: results of the matched cohort pancreatitis cytosorbents inflammatory cytokine removal (PACIFIC) study. Artif Organs. 2022; 46 (6): 1019–1026. DOI:10.1111/aor.14195. PMID: 35182395.; Huber W., Algül H., Lahmer T., Mayr U., Lehmann M., Schmid R.M., Faltlhauser A. Pancreatitis cytosorbents (CytoSorb) inflammatory cytokine removal: a prospective study (PACIFIC). Medicine (Baltimore). 2019; 98 (4): e13044. DOI:10.1097/MD.0000000000013044. PMID: 30681551.; Lindstedt S., Silverborn M., Lannemyr L., Pierre L., Larsson H., Grins E., Hyllen S., et al. Design and rationale of cytokine filtration in lung transplantation (GLUSorb): protocol for a multicenter clinical randomized controlled trial. JMIR Res Protoc. 2023; 12: e52553. DOI:10.2196/52553. PMID: 37855706.; Becker S., Lang H., Barbosa C.V., Tian Z., Melk A., Schmidt B.M.W. Efficacy of CytoSorb®: a systematic review and metaanalysis. Crit Care. 2023; 27 (1): 215. DOI:10.1186/s13054023-04492-9. PMID: 37259160.; Stockmann H., Keller T., Büttner S., Jörres A., Kindgen-Milles D., Kunz J.V., Leebmann J., et al; CytoResc Trial Investigators. CytoResc — «CytoSorb» rescue for critically ill patients undergoing the COVID-19 cytokine storm: a structured summary of a study protocol for a randomized controlled trial. Trials. 2020; 21 (1): 577. DOI:10.1186/s13063-020-04501-0. PMID: 32586396.; Хорошилов С.Е., Карпун Н.А., Половников С.Г., Никулин А.В., Кузовлев А.Н. Селективная гемосорбция эндотоксина в лечении абдоминального сепсиса. Общая реаниматология. 2009; 5 (6): 83. DOI:10.15360/1813-9779-2009-6-83.; Ушакова Н.Д., Тихонова С.Н., Розенко Д.А. Гемосорбция с использованием колонки на основе сверхсшитого стирол-дивинибензольного сополимера с иммобилизированным ЛПС-селективным лигандом в комплексе интенсивного лечения острого повреждения легких при хирургическом лечении рака легкого (клиническое наблюдение). Общая реаниматология. 2020; 16 (4): 14–20. DOI:10.15360/1813-9779-2020-4-14-20.; Ратников В.А., Щеглов А.Н., Абрамовский С.В., Симутис И.С., Данилов М.С., Иванова Г.Г., Сыроватский А.А. Предикторы клинической эффективности гемосорбции цитокинов при COVID-19. Общая реаниматология. 2023; 19 (1): 20–26. DOI:10.15360/1813-9779-2023-1-2224.; Якубцевич Р.Э., Ракашевич Д.Н. Гемосорбция у пациентов с различными видами респираторной поддержки при тяжелом течении COVID-19. Общая реаниматология. 2022; 18 (5): 10–17. DOI:10.15360/1813-9779-2022-5-10-17.; Киселев В.В., Жигалова М.С., Клычникова Е.В., Ярцев П.А. Ранние предикторы тяжелого течения острого панкреатита. Журнал им. Н.В. Склифосовского Неотложная медицинская помощь. 2023; 12 (1): 45–50. DOI:10.23934/2223-9022-2023-12-1-45-50.; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2506
-
14
Autoři: a další
Zdroj: Acta Biomedica Scientifica; Том 9, № 6 (2024); 44-51 ; 2587-9596 ; 2541-9420
Témata: противовоспалительные цитокины, COVID-19, proinflammatory cytokines, anti-inflammatory cytokines, провоспалительные цитокины
Popis souboru: application/pdf
Relation: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/5115/2932; Симбирцев А.С. Иммуно-фармакологические аспекты системы цитокинов. Бюллетень сибирской медицины. 2019; 18(1): 84-95. doi:10.20538/1682-0363-2019-1-84-95; Стагниева И.В., Бойко Н.В., Гукасян Е.Л., Бачурина А.С. Цитокины в диагностике воспалительных заболеваний верхних дыхательных путей (обзор литературы). Российская ринология. 2017; 25(4): 43-47. doi:10.17116/rosrino201725443-47; Казанцева Е.Д., Петрова А.Г., Даренская М.А., Москалева Е.В., Рычкова Л.В., Семенова Н.В. Грипп у детей: клинические, лабораторные показатели и параметры цитокинового профиля. Acta biomedica scientifica. 2023; 8(6): 41-50. doi:10.29413/ABS.2023-8.6.5; Алешина Н.И., Понежева Ж.Б., Лазарева Е.Н., Астрина О.С., Малеев В.В., Плоскирева А.А. Цитокины – место и значение в патогенезе ОРВИ и COVID-19. COVID-19.рф: Информация против пандемии. URL: https://covid19-preprints.microbe.ru/article/76 (дата доступа: 29.03.2024). doi:10.21055/preprints-3111772; Казанцева Е.Д., Петрова А.Г., Рычкова Л.В., Даренская М.А. Цитокины при гриппе у детей (обзор литературы). Сибирский научный медицинский журнал. 2024; 44(1): 124-138. [Kazantseva ED, Современные проблемы науки и образования. 2023; (5). URL: https://science-education.ru/ru/article/view?id=32994 (дата доступа: 29.03.2024).; Черешнев В.А., Гусев Е.Ю. Иммунология воспаления: роль цитокинов. Медицинская иммунология. 2001; 3(3): 361-368.; Consiglio CR, Cotugno N, Sardh F, Pou C, Amodio D, Rodriguez L, еt al. The immunology of multisystem inflammatory syndrome in children with COVID-19. Cell. 2020; 183(4): 968-981. doi:10.1016/j.cell.2020.09.016; Паршина А.А., Москалева Е.В., Петрова А.Г., Рычкова Л.В., Огарков О.Б., Орлова Е.А., и др. Вирусная нагрузка SARS-CoV-2 у новорожденных с COVID-19. Якутский медицинский журнал. 2023; 1(81): 63-66. doi:10.25789/YMJ.2023.81.16; Перегоедова В.Н., Богомолова И.К. Профиль цитокинов при коронавирусной инфекции у детей школьного возраста. Современные проблемы науки и образования. 2023; (5). URL: https://science-education.ru/ru/article/view?id=32994 (дата доступа: 29.03.2024); Алексеева Л.А., Железникова Г.Ф., Горелик Е.Ю., Скрипченко Н.В., Жирков А.А. Цитокины и нейроспецифические белки при вирусных энцефалитах и судорожном синдроме у детей. I. Вирусные энцефалиты. Инфекция и иммунитет. 2020; 10(4): 625-638. doi:10.15789/2220-7619-CAN-1448; Москалева Е.В., Петрова А.Г., Рычкова Л.В., Новикова Е.А., Ваняркина А.С. Состояние показателей иммунного статуса у детей после перенесённой новой коронавирусной инфекции. Acta biomedica scientifica. 2021; 6(2): 58-62. doi:10.29413/ABS.2021-6.2.6; Rychkova LV, Darenskaya MA, Petrova AG, Semenova NV, Moskaleva EV, Kolesnikov SI, et al. Pro-and antioxidant status in newborn with COVID-19. Bulletin of Experimental Biology and Medicine. 2023; 174(4): 464-467. doi:10.1007/s10517-023-05730-4; Ozsurekci Y, Aykac K, Er AG, Halacli B, Arasli M, Oygar PD, еt al. Predictive value of cytokine/chemokine responses for the disease severity and management in children and adult cases with COVID-19. J Med Virol. 2021; 93(5): 2828-2837. doi:10.1002/jmv.26683; Dong Y, Mo X, Hu Y, Qi X, Jiang F, Jiang Z. еt al. Epidemiology of COVID-19 among children in China. Pediatrics. 2020; 145(6): e20200702. doi:10.1542/peds.2020-0702; Graff K, Smith C, Silveira L, Jung S, Curran-Hays S, Jarjour J, еt al. Risk factors for severe COVID-19 in children. Pediatr Infect Dis J. 2021; 40(4): 137-145. doi:10.1097/INF.0000000000003043; DeBiasi RL, Song X, Delaney M, Bell M, Smith K, Pershad J, еt al. Severe coronavirus disease-2019 in children and young adults in the Washington, DC, Metropolitan region. J Pediatr. 2020; 223: 199-203. doi:10.1016/j.jpeds.2020.05.007; Бахмутова Л.А., Штепо М.В., Палкина Е.В., Шустова С.С., Лапеко С.В. Клиническое значение показателей цитокинового статуса в оценке течения постнатальной адаптации детей с задержкой внутриутробного развития. Вестник научных медицинских технологий. 2016; (4). URL: https://cyberleninka.ru/article/n/klinicheskoe-znacheniepokazateley-tsitokinovogo-statusa-v-otsenke-techeniya-postnatalnoy-adaptatsii-detey-s-zaderzhkoy (дата доступа: 29.03.2024).; https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/5115
-
15
Autoři: a další
Přispěvatelé: a další
Zdroj: Almanac of Clinical Medicine; Vol 52, No 8 (2024); 405-416 ; Альманах клинической медицины; Vol 52, No 8 (2024); 405-416 ; 2587-9294 ; 2072-0505
Témata: inflammatory bowel diseases, ulcerative colitis, Crohn's disease, atherosclerosis, chronic inflammation, pro-inflammatory cytokines, gene polymorphism, воспалительные заболевания кишечника, язвенный колит, болезнь Крона, атеросклероз, хроническое воспаление, провоспалительные цитокины, полиморфизм генов
Popis souboru: application/pdf
Relation: https://almclinmed.ru/jour/article/view/17271/1709; https://almclinmed.ru/jour/article/view/17271/1720; https://almclinmed.ru/jour/article/downloadSuppFile/17271/159950; https://almclinmed.ru/jour/article/downloadSuppFile/17271/160332; https://almclinmed.ru/jour/article/downloadSuppFile/17271/160333; https://almclinmed.ru/jour/article/view/17271
-
16
Autoři:
Zdroj: Mìžnarodnij Endokrinologìčnij Žurnal, Vol 13, Iss 4, Pp 262-266 (2017)
INTERNATIONAL JOURNAL OF ENDOCRINOLOGY; Том 13, № 4 (2017); 262-266
Международный эндокринологический журнал-Mìžnarodnij endokrinologìčnij žurnal; Том 13, № 4 (2017); 262-266
Міжнародний ендокринологічний журнал-Mìžnarodnij endokrinologìčnij žurnal; Том 13, № 4 (2017); 262-266Témata: гіпотиреоз, прозапальні цитокіни, дисліпідемія, серцево-судинна система, 03 medical and health sciences, 0302 clinical medicine, proinflammatory cytokines, dyslipidemia, cardiovascular system, hypothyroidism, гипотиреоз, провоспалительные цитокины, дислипидемия, сердечно-сосудистая система, RC648-665, Diseases of the endocrine glands. Clinical endocrinology, 3. Good health
Popis souboru: application/pdf
Přístupová URL adresa: http://iej.zaslavsky.com.ua/article/download/106653/102480
https://doaj.org/article/76afe646671f405e9caae47ac2cf3e8c
https://core.ac.uk/display/87799553
http://iej.zaslavsky.com.ua/article/view/106653
http://iej.zaslavsky.com.ua/article/download/106653/102480
http://iej.zaslavsky.com.ua/article/view/106653 -
17
Autoři: a další
Zdroj: INTERNATIONAL JOURNAL OF ENDOCRINOLOGY; Том 15, № 2 (2019); 128-132
Международный эндокринологический журнал-Mìžnarodnij endokrinologìčnij žurnal; Том 15, № 2 (2019); 128-132
Міжнародний ендокринологічний журнал-Mìžnarodnij endokrinologìčnij žurnal; Том 15, № 2 (2019); 128-132Témata: 03 medical and health sciences, 0302 clinical medicine, щитовидная железа, сердце, гипотиреоз, гипертрофия миокарда, левый желудочек, провоспалительные цитокины, thyroid gland, heart, hypothyroidism, myocardial hypertrophy, left ventricle, proinflammatory cytokines, щитоподібна залоза, серце, гіпотиреоз, гіпертрофія міокарда, лівий шлуночок, прозапальні цитокіни, 3. Good health
Popis souboru: application/pdf
-
18
Zdroj: Госпитальная медицина: наука и практика. 4:10-16
-
19
Autoři:
Zdroj: Буковинський медичний вісник; Том 24, № 3 (95) (2020); 108-113
Буковинский медицинский вестник; Том 24, № 3 (95) (2020); 108-113
Bukovinian Medical Herald; Том 24, № 3 (95) (2020); 108-113Témata: rosacea, oxidative stress, proinflammatory cytokines, розацеа, оксидативний стресс, провоспалительные цитокины, оксидативний стрес, прозапальні цитокіни, 3. Good health
Popis souboru: application/pdf
Přístupová URL adresa: http://e-bmv.bsmu.edu.ua/article/download/2413-0737.XXIV.3.95.2020.80/216616
http://e-bmv.bsmu.edu.ua/article/view/2413-0737.XXIV.3.95.2020.80
http://e-bmv.bsmu.edu.ua/article/download/2413-0737.XXIV.3.95.2020.80/216616
http://e-bmv.bsmu.edu.ua/article/view/2413-0737.XXIV.3.95.2020.80 -
20
Zdroj: Хирургия. Восточная Европа. :223-236
Témata: 0301 basic medicine, liver transplantation, endothelium, гипотермическая оксигенированная машинная перфузия, фактор Виллебранда, трансплантация печени, von Willebrand factor, провоспалительные цитокины, pro-inflammatory cytokines, клетки Купфера, 03 medical and health sciences, hypothermic oxygenated machine perfusion, синусоиды, Kupffer cells, эндотелий, sinusoids
Nájsť tento článok vo Web of Science